Как разводить хондролон с водой для инъекций: Хондролон инструкция по применению: показания, противопоказания, побочное действие – описание Chondrolon Лиофилизат для приготовления раствора для в/м введения (3162)

Содержание

Хондролон – Лекарственные препараты – 28.05.2017

анонимно (Мужчина, 103 года)

Хондролон приминение

Здравствуйте, доктор! Моей маме назначили хондралон инъекции. В анотации написано разводить с водой, а доктор написал с физраствором. Можно ли разводить хондролон с физраствором?

Любовь Литвиненко

полисегментарный остеохондроз,грыжи дисков

Здравствуйте уважаемый Николай Владиславович! Мне поставили диагноз КТ-полисегментарный остеохондроз грудного отдела позвоночника,задние срединные грыжи дисков Th-7,Th-8,T 9-Th20(по 3 мм).При этом склероз замыкательных пластинок Th3-Th22,краевые компенсаторные разрастания тел позвонковTh3-Th22.До КТ-ставили уколы…

лариса шувалова

Артроз плюстнефалангового сустава

Здравствуйте,мне 30 лет,у меня в течении 3 лет болит нога,при нагрузке, т.е. при ходьбе,каблуки не ношу совсем. Рентген. диагноз-артроз плюстнефалангового сустава,С-реакт белок и РФ отр. ставили НПВС и хондролон,дней 5,что…

Любовь Литвиненко

Задать вопрос консультанту

Здравствуйте уважаемый Николай Владиславович! Пожалуйста,подскажите-мне52 года жен. вес 58 кг,рост160.У меня уже давно межреберная невралгия,постоянно массаж,уколы диклофенака,мидокалма,комбилипена,хондролона.Как то прошла мануальную терапию,со спиной вроде стало легче,но вот уже 4 месяца обострился шейный…

olga poltoranina

Онемели пальцы

Здравствуйте, мне 43 года. 1,5 месяца назад у меня начали неметь на левой руке мизинец и безымянный палец – сначала подушечки пальцев, потом ладонь, сейчас болезненные ощущения уде до локтя….

Ольга Ш.

Здравствуйте. Мне 28 лет. При обследовании МРТ (поясничный отдел позвоночника) поставлен диагноз протрузия смежных дисков L3-L5. Как это можно вылечить? Постоянно болит в области поясницы, в грудном отделе и шейном…

Валентина Куликова

Межпозвонковая грыжа

Здравствуйте, уважаемый доктор!!! Болею с августа 2009 года. В сентябре сделала МРТ. Диагноз -остеохондроз в ПДС L4-S1. парамедианная грыжа (влево) L5-S1 6 мм. Лечили нестероидными , гормональнами , хондролоном и…

Хондролон уколы: состав, показания и инструкция по применению внутримышечных инъекций, как разводить лекарство с водой, от чего ставить, дешевые аналоги в ампулах

Малоподвижный образ жизни, часовые просиживания у компьютера, отказ от спорта, набор веса, алкоголь в больших количествах – факторы, разрушающие хрящевую ткань. Любой организм имеет свойство изнашиваться. Болевые ощущения в сочленениях и позвоночнике, хруст или щелканье в них, ограниченность в движениях – сигнал к тому, что пора начинать принимать хондропротекторы.

Среди хондропротекторов особой популярностью пользуется лекарственное средство Хондролон в инъекциях. Такой способ введения лекарства обеспечивает быстрый и максимально положительный эффект: самочувствие человека значительно улучшается, а структура ткани хряща либо восстанавливается, либо остается в нынешнем состоянии, не допуская дальнейшего усугубления проблемы.

Состав лекарства

Активным компонентом препарата является хондроитина сульфат – натуральный компонент, который выделяется из хрящевых тканей разных пород крупного рогатого скота. Вспомогательных веществ в медикаментозном средстве нет.

Активные компонентыВспомогательные компонентыРастворитель
100 мг хондроитина сульфатаОтсутствуют1 мл воды для инъекций

Форма выпуска Хондролона – сухой порошок для приготовления раствора. В качестве растворителя можно использовать воду для инъекций. Медикамент продается в ампулах, которые расфасованы в картонные упаковки по 5 и 10 штук.

Описание свойств и воздействий

Хондроитина сульфат – активное вещество препарата, обладающее хонропротекторным свойством. В норме этот компонент должен содержаться в здоровой хрящевой ткани человека.

Сразу же после введения активное вещество быстро всасывается в кровь, минуя желудочно‐кишечный тракт. Спустя 60 минут его концентрация достигает максимума. Вместе с кровотоком хондроитина сульфат достигает пораженных участков хрящевой ткани суставов и начинает накапливаться там.

Синовиальная оболочка не препятствует проникновению компонента препарата внутрь суставной сумки: спустя 15 минут его можно обнаружить в синовиальной жидкости, а затем – в хряще сустава. Выводится препарат из организма почками.

Хондроитина сульфат проявляет следующие свойства:

  • Угнетает выработку ферментов, которые разрушают хрящевую ткань.
  • Стимулирует выработку сложных белков в клетках хряща, являющихся основой образования новых клеток ткани. Этот процесс обеспечивает запуск регенерации суставов.
  • Ускоряет обменные процессы в хрящах и прилегающих костных тканях.
  • Воздействует на медиаторы воспаления, сокращая их количество при попадании в суставную жидкость.
  • Способствует снижению количества вырабатываемых лейкотриенов и простагландинов, за счет чего достигается обезболивающий и противовоспалительный эффект.

Хондролон в уколах оказывает ряд положительных воздействий:

  • Тормозит дегенеративные процессы в хрящевой ткани суставов.
  • Уменьшает интенсивность воспалительного процесса в суставах.
  • Способствует восстановлению структуры ткани хряща за счет регенерации ее клеток.
  • Участвует в синтезе гликозаминогликанов – аминосахаридов, являющихся катализатором производства в организме хондроитина, гиалуроновой кислоты, коллагена – основных материалов, необходимых для построения и восстановления хрящевой ткани.
  • Активизирует процесс выработки внутрисуставной жидкости, что дает возможность уменьшить интенсивность боли.
  • Уменьшает боль в суставах, улучшает их подвижность и амплитуду вращений, устраняя ощущение скованности после утреннего пробуждения.
  • Минимизирует частоту возникновения рецидивов при хронических формах заболеваний суставов, предотвращает развитие вторичных патологий.

Первые положительные изменения можно заметить спустя 2–3 недели после регулярного использования Хондролона: большинство пациентов отмечают снижение интенсивности болевых ощущений и увеличение объема движений в пораженных суставах. Полученный эффект сохраняется на протяжении 5–6 месяцев.

Показания к применению: от чего помогает препарат

Препарат назначают при наличии следующих патологий:

  1. Дегенеративно‐дистрофические изменения в позвоночнике и суставах, сопровождающиеся разрушением хрящевой ткани.
  2. Воспалительные поражения суставов и позвоночника.
  3. Артроз, остеоартроз.
  4. Остеохондроз.
  5. Измененное состояние межпозвоночных дисков.
  6. Реактивный артрит.
  7. Период восстановления после перенесенных травм и переломов для ускорения формирования костной мозоли.

Инструкция: как разводить ампулы с водой и колоть внутримышечно

Хондролон в ампулах предназначен для внутримышечной инъекции. Порошок хондроитина сульфата, запечатанный в ампуле, непосредственно перед введением в организм необходимо развести водой для инъекций (1 мл), тщательно взболтать образовавшийся раствор. Это необходимо для полного растворения частиц активного компонента. Процедуры внутримышечного введения препарата должны проводится с интервалом – 1 укол в 2 дня:

  • Первые 4 инъекции внутримышечно вводится по 100 мг активного вещества, что равно содержимому 1 ампулы.
  • Начиная с 5 процедуры, при хорошей переносимости активного вещества, дозировку инъекции следует увеличить до 200 мг (2 ампулы сухого раствора и 2 ампулы воды для инъекций).
  • Предполагаемый курс лечения составляет 25–35 инъекций: все зависит от индивидуальных особенностей пациента и уровня развития дегенеративных процессов хрящевой ткани в организме.
  • Рекомендуется по истечению полугода курс лечения Хондролоном повторить.

ВАЖНО! Ни в коем случае нельзя приостанавливать лечение препаратом, даже если наступило значительное облегчение. Хондролон обеспечит достижение желаемого терапевтического эффекта и закрепит его только при прохождении полного курса.

Не лишним будет упомянуть о том, что процедуру введения инъекции лучше доверить профессионалу, так как несоблюдение элементарных требований может привести к печальным последствиям.

Как ставить уколы:

  1. Ампулу с Хондролоном необходимо вскрыть при помощи специального ножа, входящего в состав комплекта.
  2. Параллельно набрать шприцом (5 кубов) инъекционную воду объемом 1 мл и впрыснуть ее в ампулу с лекарством.
  3. Содержимое необходимо тщательно растворить, проделав ряд энергичных встряхиваний.
  4. Обработать поверхность кожи в предполагаемом месте введения лекарства при помощи ваты, смоченной в медицинском спирте.
  5. Иглу быстро вставить в мышцу (верхний внешний квадрант ягодицы), раствор ввести максимально медленно.
  6. Во избежание выхода лекарства после инъекции, место введения следует прижать ваткой со спиртом сразу же после того, как была вынута из тела игла шприца.
  7. Каждый раз необходимо стараться выбирать новое место для укола, так как попадания в одну точку вызовут развитие болезненных уплотнений.

Максимального терапевтического эффекта можно достигнуть, включив в схему лечения специальные физические упражнения или комплексы нагрузок. Выполняя любые движения, пациент обеспечивает приток крови к местам поражения, а вместе с кровотоком к проблемным зонам будет доставляться активное вещество препарата, что даст возможность ускорить процесс выздоровления.

Аналоги

При необходимости Хондролон можно заменить любым из нижеперечисленных аналогов, некоторые из них являются более дешевыми:

  • Мукосат (Беларусь). Активное вещество – хондроитина сульфат, полученный из бронхов и трахей телят. Спектр действия препарата тот же, что и у Хондролона. Вводится в организм путем внутримышечной инъекции.
  • Артрадол (Россия). Уколы, предназначенные для лечения дистрофически‐дегенеративных изменений хрящевой ткани. Особенность препарата заключается в том, что ощутить положительный эффект от лечения можно только спустя несколько курсов, каждый из которых включает 25–30 инъекций. Активное вещество – хондроитина сульфат.
  • Алфлутоп (Румыния). Состав препарата, помимо хондроитина сульфата, содержит гиалуроновую кислоту, микроэлементы, вытяжки из хрящей морских рыб, аминокислоты. Препарат может вызвать аллергические реакции на входящие в состав компоненты.
  • Хонсурид (Россия). Активное вещество было выделено из трахей крупного рогатого скота. Показания к применению и механизм действия идентичны Хондролону.

Побочные эффекты от инъекций

Поскольку препарат является полностью натуральным, риск развития побочных реакций практически сведен к минимуму, но не исключен. К нежелательным последствиям лечения медикаментом можно отнести:

  1. Аллергическую реакцию в виде кожных высыпаний, зуда.
  2. Образование гематом в месте укола при непреднамеренном попадании иглы шприца в кровеносный сосуд.
  3. Развитие болезненных уплотнений в случае систематического введения раствора в одно и то же место.
  4. Незначительное повышение температуры тела.
  5. Покраснение участков эпителия.
  6. Некоторые пациенты отмечают приступы головокружения, тошноты и рвоты.

Противопоказания

Лечение Хондролоном не стоит начинать тем больным, которые имеют следующие диагнозы или проблемы со здоровьем в анамнезе:

  • Индивидуальная непереносимость активного компонента.
  • Нарушения свертываемости крови, склонность к кровотечениям.
  • Тромбофлебит.
  • Детский возраст (до 15 лет).
  • Период ожидания ребенка и кормления грудью.

Производитель, условия хранения и сроки годности

Фирма‐производитель медикамента – НПО «Микроген», Россия. Средство следует хранить в сухом и защищенном от попадания прямых солнечных лучей месте при температуре, не превышающей +20С. Срок годности – 36 месяцев с даты изготовления, указанной на картонной упаковке.

Итоги

  1. Хондролон – уникальное лекарственное средство, являющееся полностью натуральным. Основным его компонентом является хондроитина сульфат – неотъемлемый элемент хряща и синовиальной жидкости.
  2. При регулярном применении препарата уменьшаются болевые ощущения в суставах и позвоночнике, ликвидируются клинические проявления воспалительных процессов, протекающих в них, восстанавливается подвижность и амплитуда вращений сочленений.
  3. Медикамент выпускается в виде порошка, который подлежит растворению в инъекционной воде с целью дальнейшего введения в организм при помощи шприца.
  4. Курс уколов обычно назначается больным с дегенеративно‐дистрофическими изменениями в суставах и позвоночнике, а также как часть реабилитации после перелома или травмы.
  5. Принимать препарат следует согласно обозначенной лечащим врачом схеме. Практически всегда Хондролон ставят внутримышечно 1 раз в день через сутки.
  6. Исключить применение Хондролона следует тем, кто испытывает трудности со свертываемостью крови, склонен к аллергии.
  7. При необходимости препарат можно без труда заменить аналогами зарубежного или отечественного производства.
  8. Хранить лекарственное средство следует в течение 3 лет в сухом прохладном месте.

Окончила колледж НФаУ по специальности фармация при Харьковском национальном фармацевтическом университете.

Отзыв о Средство, стимулирующее регенерацию хрящевой ткани Микроген Хондролон от Ara | Ara

Всем привет.

Я как и многие мамы мучилась периодически болями в спине, а тут раз и накрыло, все кончилось вызовом скорой и последствиями оказалось остеохондроз поясничного отдела второй стадии (кому интересно подробности )

Врачи выписали кучу уколов в основном витаминчики по типу В. А я разогнуться не могла, и встать с дивана, нужно было обезболивающие и лекарство, которое лечит. Пошла я к платному врачу выписал он мне препарат от местного производителя, дешёвый аналог “хондролона”. В моей ситуации, мне нужен был качественный препарат, так перерыв кучу информации посоветовавшись с другим врачом купила “хондролон”.

Состав

100 мг составляет содержимое 1 ампулы.

В упаковке 10 капсул, но есть разные упаковки 5 или 15 штук, внутри капсул сухой порошок

который дополнительно нужно разводить, водой для инъекции и шприцы, у меня на 5 мл.

Набор для инъекции

Разводить капсулы нужно 1 капсулу на 1 мл воды, у меня вода два мл выливаю половину.

Вода для инъекции

В инструкции описано, что нужно ставить через день 2 капсулы, я ставлю каждый день по 1 капсуле. Курс 25 дней, мне прописали двадцать,повторять нужно каждые полгода.

Как использовать Хондролон инструкция по применению четко поясняет: лекарство назначают в виде внутримышечных инъекций 1 раз в 2 дня. Начальная доза составляет 100 мг. После трёх инъекций, если хорошая переносимость, можно повысить дозу в 2 раза — до 200 мг.

Уколы применяют рекомендованным курсом лечения – до 35 штук. По показаниям можно повторить лечение через полгода. При этом длительность согласовывается с врачом.

Хорошей эффективности можно достичь применением 25 и более инъекций. После повторного курса терапии сохраняется продолжительный эффект.

Улучшения пришли на первый же день, через полтора часа, подействовало обезболивающие наверно. Ставила вечером, до обеда следующего дня чувствовала себя прекрасно. Но потом началась адская боль опять.

Пройдя только 10 уколов, могу сказать, мне снова легче, я могу спокойно двигаться, а не лежу плача от боли. Конечно, все лечение я прохожу в комплексе с натираниями мазями. Физиолечение ещё не проходила, не назначали.

Все здоровья, спасибо что заглянули.

Где купить “Средство, стимулирующее регенерацию хрящевой ткани Микроген Хондролон”?

Подробнее о товаре

инструкция к препарату, описание препарата, его аналоги, отзывы и противопоказания

Современный сидячий образ жизни пророчит нам в будущем проблемы с суставами и позвоночником. Уже сейчас половина людей на всей планете испытывает недостаток двигательной активности, что непременно сказывается на состоянии здоровья костей, а, впрочем, и всего организма. Люди вынуждены уже в молодом возрасте принимать препараты для укрепления хрящевой ткани суставов. Одним из таких лекарственных средств является «Хондрогард». Инструкция по применению этого лекарства интересует многих, поэтому рассмотрим ее подробнее и выясним все подводные камни.

Состав и действие препарата

Высокомолекулярный мукополисахарид хондроитина сульфат является действующим веществом лекарства «Хондрогард». Инструкция по применению сообщает, что это вещество влияет на обменные процессы в хряще суставов, уменьшая дегенеративные изменения и восстанавливая хрящевую ткань. Это происходит за счет стимулирования синтеза протеогликанов, которые отвечают за образование гиалинового хряща. Синовиальная оболочка не препятствует проникновению препарата к месту возникновения дегенеративно-дистрофического заболевания.

После внутримышечного введения вещество уже через 30 минут попадает в кровь, а через 48 часов полностью проникает в суставной хрящ. Хондроитина сульфат накапливается в синовиальной жидкости, что способствует сохранению долгого терапевтического эффекта. Болезненность и малоподвижность суставов исчезают уже через 2 недели после первого введения препарата «Хондрогард». Инструкция по применению обещает, что через 3 недели применения инъекций исчезнут все симптомы проявления синовита.

Медикамент «Хондрогард» (уколы). Инструкция по применению, дозировки

Показаниями к назначению лекарства являются:

Препарат выпускается в только ампулах, содержащих раствор для внутривенного или внутримышечного введения. Обычно инъекции «Хондрогарда» назначаются через день в дозе 100 мг. Вводить содержимое ампулы нужно без разведения, медленно, постепенно. Если лекарство хорошо переносится организмом, то дозу можно увеличить до 200 мг за один прием, начиная с 4-5 инъекции. Курс лечения хондроитина сульфатом составляет 25-30 уколов. Повторный курс лечения можно начинать не менее чем через 6 месяцев.

Противопоказания и другие рекомендации по лечению препаратом

Кому нежелательно назначать средство «Хондрогард»? Инструкция по применению запрещает прием медицинского препарата лицами, страдающими тромбофлебитами, кровотечениями, повышенной чувствительностью к действующему веществу. Также инъекции не делают детям, беременным женщинам и кормящим матерям.

Лекарство может вызвать некоторые побочные эффекты, например, крапивницу, кожный зуд, дерматит, геморрагии в месте укола. Однако эти явления встречаются редко, так как препарат не оказывает сильного системного действия на другие органы и ткани.

Совместное применение с лекарствами, разжижающими кровь (антикоагулянтами, фибринолитиками) крайне не рекомендуется, так как может возникнуть усиление их терапевтического эффекта. Лучше всего перед началом курса терапии сделать анализ на показатели свертываемости крови.

Препарат «Хондрогард».

Инструкция по применению. Отзывы

В большинстве случаев при осуществлении инъекций больные отмечали довольно хороший эффект буквально после 10 уколов: отступала ноющая боль, восстанавливалась двигательная активность пораженного сустава, снижалось воспаление, улучшалось общее самочувствие больного. Ни у одного пациента не было выявлено передозировки лекарственным средством, появление побочных эффектов также встречается редко. Большими недостатками люди считают высокую цену препарата и то, что его отпускают только по рецепту. Многих именно это заставляет искать более дешевые аналоги, которые можно приобрести без рецепта.

Существуют ли у препарата «Хондрогард» аналоги?

Данное средство имеет массу заменителей, которые выпускаются в различных лекарственных формах. Наиболее распространенным точным аналогом можно назвать медикамент «Мукосат». Действующим веществом в нем так же является хондроитина сульфат, получаемый из трахеи крупного рогатого скота. Показания и противопоказания у этих двух препаратов одни и те же. Существенное отличие лекарства “Мукосат” лишь в том, что оно выпускается не только в ампулах, но и в таблетках или капсулах. По цене же медикамент лишь немного уступает средству “Хондрогард”, но зато его можно купить в аптеке без предоставления рецепта.

Популярным аналогом по действующему веществу можно назвать также препарат «Хондроксид». Он выпускается только в таблетках, которые следует принимать 2 раза в сутки. Так как лекарство попадает в ЖКТ, то могут отмечаться побочные эффекты в виде тошноты, рвоты и диареи.

Медикамент «Хондролон» является заменителем, который применяется тоже только в виде инъекций. Других форм, например, мазей или таблеток, не существует. Перед выполнением уколов данным лекарственным средством необходимо разводить раствор, находящийся в ампуле. Обычно одна ампула смешивается с 1 мл воды для инъекций.

К заменителям Хондрогарда еще относятся препараты «Артрадол», «Структум», «Картилаг Витрум».

Аналоги так же хороши?

Если говорить о заменителях, имеющих одинаковый состав с лекарством “Хондрогард”, то можно сказать, что они отличаются лишь названием и производителем. Более высокая стоимость лекарственного средства не указывает на его лучшее действие. Иногда даже самый дешевый аналог помогает быстрее. Все же не стоит забывать, что только врач, исходя из особенностей вашего организма, может назначать и подбирать вам лекарства. Это характерно и для заменителей основного препарата.

Что касается лекарственных средств, подобных по производимому лечебному эффекту («Алфлутоп», «Ибупрофен», «Хондрамин»), то они не способны восстанавливать хрящевую ткань. Эти препараты обладают противовоспалительным и обезболивающим эффектом и не устраняют причину появления заболевания.

Натрия хлорид инструкция по применению растворитель 10 мл

&nbsp &nbsp

Растворитель Вода для инъекций предназначен для разведения лекарственных форм. Отпускается без рецепта врача. Показан растворитель как детям, так и взрослым.

Торговое название: Вода для инъекций

Международное непатентованное или групировочное название: натрия хлорид

Лекарственная форма: растворитель для приготовления лекарственных форм для инъекций

Фото упаковки растворителя вода для инъекций 2 мл, где указан состав

Растворитель Вода для инъекций состав

 

вода для инъекций

Описание: Бесцветная прозрачная жидкость без запаха.

Фармакотерапевтическая группа:

Растворитель.

Код ATX: V07AB

Фармакологические свойства

Фармакодинамика

Вода для инъекций не обладает фармакологической активностью. Используется в качестве растворителя и служит для приготовления инфузионных и инъекционных растворов, обеспечивая оптимальные условия для совместимости и эффективности субстратов и воды.

Вода для инъекций показания к применению

 

Растворение I разведение лекарственных препаратов для их парентерального (инъекционного) введения. Применяется с целью приготовления стерильных инфузионных (инъекционных) растворов из порошков, лиофилизатов и концентратов.

Вода для инъекций противопоказания

Вода для инъекций в качестве растворителя лекарственных средств не применяется, если в качестве обязательного для некоторых из них указан другой растворитель.

Применение при беременности и в период грудного вскармливания

Применение при беременности и в период лактации определяется инструкцией того препарата,

для разведения которого будет применяться вода для инъекций.

 

Растворитель Вода для инъекций: аналоги более дешевые

Обратите внимание!!! Прямые аналоги лекарств следует выбирать по действующему веществу. У препарата Вода для инъекций действующее вещество — Вода для инъекций, из нашей статьи вы сможете узнать про более дешевые аналоги Воды для инъекций.

Растворитель Вода для инъекций: дозировка и способ применения

Подкожно, внутримышечно, внутривенно, внутриартериально после растворения или разведения лекарственных препаратов.

Доза и скорость введения должны определяться инструкцией того препарата, для разведения которого будет применятся вода для инъекций. Приготовление растворов лекарственных средств с использованием воды для инъекций должно производиться в асептических условиях.

Вода для инъекций побочные эффекты

 

Не установлено.

Передозировка
Нет данных.

Взаимодействие с другими лекарственными средствами
При смешивании с другими лекарственными средствами (инфузионные растворы, концентраты для приготовления инфузий; инъекционные растворы, порошки, сухие вещества для приготовления инъекций) необходим визуальный контроль на совместимость (может иметь место химическая или фармацевтическая несовместимость).

Особые указания

Воду для инъекций не смешивают с масляными растворами для инъекций.

Вода для инъекций не может быть прямо введена внутрисосудисто из-за низкого осмотического давления (риск гемолиза!).

Нет данных о влиянии препарата на скорость психомоторных реакций при вождении автомобиля и работе с точными механизмами.

Допускается замораживание при транспортировании.

Форма выпуска

Растворитель для приготовления лекарственных форм для инъекций.

По 2, 5 или 10 мл в ампулы из полиэтилена низкой плотности или полипропилена.

По 5 или 10 ампул вместе с инструкцией по применению в пачке из картона.

По 100, 200, 250, 400, 500 или 1000 мл во флаконы полипропиленовые, укупоренные приваренными полипропиленовыми колпачками. Один флакон вместе с инструкцией по применению в пачке из картона.

Для стационаров

От 1 до 40 флаконов по 100, 200, 250, 400, 500 или 1000 мл вместе с инструкцией по применению в количестве равном количеству флаконов в гофрокоробе из картона.

Фото флакона растворителя вода для инъекций 2 мл

Срок годности

3 года. Не применять после истечения срока годности!

Фото упаковки растворителя вода для инъекций 2 мл, где указан срок годности

Условия хранения

При температуре не выше 25 °С. Хранить в недоступном для детей месте.

 

Условия отпуска из аптек
По рецепту

Фото упаковки растворителя вода для инъекций 2 мл, где указана цена

Производитель/организация, принимающая претензии

ООО «Гротекс», Россия

195279, Санкт-Петербург, Индустриальный пр., д. 71, корп. 2, лит. А

Тел.: +7 812 38547 87, Факс: +7 812 385 47 88

www.grotexmed.com

Фото упаковки растворителя вода для инъекций 2 мл, где указан производитель

Растворитель Вода для инъекций 2 мл аннотация (инструкция по применению) препарата в фотографиях

 

Фото инструкции по применению растворителя вода для инъекций 2 мл, часть 1

 

Фото инструкции по применению растворителя вода для инъекций 2 мл, часть 2

Растворитель Вода для инъекций: отзывы о препарате

Ирина Петрова, Москва

Я когда лежала в роддоме с первым ребенком, мне сказали, что этим растворителем дома можно промывать новорожденному ребенку пупочную рану. Также порекомендовали мазать зеленкой, для того чтобы как можно быстрее отпал пупочный остаток. Вода для инъекции хорошая, у ребенка вокруг пупка не было никакого покраснения.

Руслан Абрамов, Пушкино

У нас на станции скорой помощи в обязательном порядке есть такая вода для инъекций. Причем не только в маленьких ампулах. При помощи этого растворителя можно разводить практические любые препараты, например: Тавегил, Магнезию или наркотические легкие препараты. Ведь если бы не было этой воды, то такие препараты колоть больному просто нельзя, ведь может наступить летальный исход.

Наталья Иванова, Апатиты

В больнице я лежала с ангиной, мне постоянно ставили капельницы. Также врач мне делал уколы, которые переносила я тяжело. Сначала он разводил препарат с натрием хлорида, поэтому мне было больно переносить укол. Но как только врач начал разводить его с этой водой, я переносила препарат нормально.

Роман Гнатенко, Владимир

Мне не очень понравился этот растворитель. Разводили мне его с препаратом, точно не помню, как он называется. Факт тот, что от него мне стало плохо, это, наверное, не из-за растворителя, а из-за самого лекарственного средства. А вот из-за растворителя укол был болезненный.

Екатерина Попова, Кольчугино

Растворитель – это хорошая штука, при помощи которой можно разводить лекарственные препараты. Я постоянно его покупаю, так как у меня ревматизм, и все препараты, которые мне назначал доктор, необходимо разводить. Я предпочитаю именно этот растворитель, а не Натрия хлорид.

Ольга Тереньтева, Сызрань

В амбулатории у нас всегда есть эта вода. Мы, если честно, не только разводим препараты, но и просто используем ее, чтобы протирать столы после больного. Вода обладает дезинфицирующим действием, хоть и легким.

Галина Кумарова, Нерюнгри

Растворитель не имеет сложного состава, поэтому его можно принимать с разными препаратами. Естественно, только в том случае, если в самом препарате нет необходимого растворителя. Я всегда покупаю именно этот растворитель.

Любовь Тихонова, Александров

В родильном отделении мне кололи Цефтриаксон. Так вот его, разводили именно этим растворителем, так как другой, например натрия хлорид, поглощал полезные частицы основного действующего вещества. Препарат поэтому я и переносила болезненно, так как он не способен обезболить. Да и растворитель – это простая отфильтрованная через прибор вода.

Ирина Мочалова, Москва

Мне не очень понравился этот растворитель, например, если разводить его с Лидокаином, то боль все равно остается. Мне удаляли зуб, и чтобы немного устранить болевой синдром, кололи его с водой. Наверное, просто не стоило его разводить. Как мне кажется, что такой препарат не разводят растворителями.

Екатерина Омелена, Тюмень

Раньше, насколько я помню, такая вода была в стеклянной упаковке. Теперь же ее можно приобрести в пластмассовой ампуле. Могу сказать, что это очень удобно, ведь теперь мне не приходится резать свои пальцы об стекло. Стоит вода такая недорого.

Роман Любимов, Владимир

Не очень полезный растворитель, так как состоит только из воды. Как по мне, так лучше всего использовать натрия хлорид, он приносит больше пользы, когда взаимодействует с лекарственным препаратом.

Определение содержания хондроитинсульфата в сырье и пищевых добавках методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с ультрафиолетовым детектированием после ферментативного гидролиза: однолабораторная валидация

Реферат

от 5 до 100% (масс./масс.) хондроитинсульфата. Хондроитинсульфат сначала селективно гидролизуется ферментом хондроитиназой ACII с образованием не-, моно-, ди- и трисульфатированных ненасыщенных дисахаридов; полученные дисахариды затем количественно определяют с помощью ионно-парной жидкостной хроматографии с ультрафиолетовым детектированием.Количества отдельных дисахаридов суммируют, чтобы получить общее количество хондроитинсульфата в материале. Для определения воспроизводимости, точности, селективности, предела обнаружения, предела количественного определения, надежности и линейности метода была проведена однолабораторная валидация. Точность воспроизводимости общего содержания хондроитинсульфата составляла от 1,60 до 4,72% относительного стандартного отклонения, а значения HorRat находились в диапазоне от 0,79 до 2,25. Извлечение хондроитинсульфата из отрицательного контроля сырья составляло от 101 до 102%, а извлечение из отрицательного контроля готового продукта составляло от 105 до 106%.

Хондроитинсульфат (ХС) представляет собой отрицательно заряженный полимерный гликозаминогликан (ГАГ), состоящий из чередующихся остатков гликуроновой кислоты и N -ацетилгексозамина, соединенных (β1-3 гексуронидной и β1-4- N -ацетилгексозаминидной связью (1; ) , Он тесно связан с другими ГАГ, такими как дерматансульфат, гиалуроновая кислота, гепарин, гепарансульфат и кератансульфат.CS содержит N -ацетилгалактозамин (GalNAc) в виде гексозамина и глюкуроновую кислоту (GlcA) в качестве фрагмента гликуроновой кислоты ( 2), в то время как другие ГАГ содержат другие остатки гексозамина и/или гликуроновой кислоты.Любой из остатков может быть сульфатирован в разных положениях.

Структуры хондроитинсульфата и ненасыщенных дисахаридов, полученные в результате ферментативного гидролиза ферментом хондроитиназой AC II.

CS является основным компонентом соединительной ткани и частично отвечает за обеспечение гибкости этих тканей. Пероральное введение CS может помочь в лечении симптомов остеоартрита (3–8), и в результате легко доступны пищевые добавки, содержащие CS, которые, как утверждается, способствуют здоровью суставов.Основными коммерческими источниками сырья для CS являются бычья трахея, свиная кожа и реберный хрящ, а также акульи хрящи.

Количественный анализ CS в сырье CS и пищевых добавках, содержащих сырье CS, был чрезвычайно сложным из-за широкого диапазона молекулярной массы полимеров CS, его плохого поглощения УФ-излучения и сильной ионной природы. Другие родственные ГАГ могут присутствовать в качестве примесей или примесей в материалах CS, и, таким образом, любая аналитическая методология, предназначенная для количественного определения CS, должна быть селективной в отношении CS в присутствии этих других ГАГ.Реакция с карбазолом (9,10), титрование хлоридом цетилпиридиния (CPC) (11) и эксклюзионная хроматография (12) использовались для характеристики CS; однако эти методы не могут различать ХС и родственные ГАГ и могут влиять на готовые пищевые добавки. В частности, титрование CPC стало популярным методом определения чистоты CS; однако этот метод не только не может отличить ХС от других ГАГ, но и дает положительные результаты для любого крупного аниона, такого как каррагинан, белки и поверхностно-активные вещества.

Ферментативный гидролиз CS с последующей высокоэффективной жидкостной хроматографией (ЖХ; 1, 2, 13–22) использовался для характеристики сырья CS и присутствия CS в тканях. CS обрабатывают ферментом хондроитиназой ABC или хондроитиназой AC для селективного гидролиза полимера до ненасыщенных дисахаридных звеньев (). Хондроитиназа ABC будет гидролизовать как CS, так и дерматансульфат (иногда называемый «хондроитинсульфатом B»). в то время как хондроитиназа AC специфична для CS.Полученные ненасыщенные дисахаридные звенья затем можно разделить и количественно определить с помощью ионообменной хроматографии (2, 13–19, 21, 22) или обращенно-фазовой хроматографии (1, 17, 20) с обнаружением либо в ультрафиолетовом (УФ) диапазоне (1, 2, 13–16, 18, 20), обнаружение электропроводности (17) или предколоночная дериватизация с обнаружением флуоресценции (19, 21, 22). Однако ни один из этих методов не применялся к пищевым добавкам, и ни один из них не прошел строгую валидацию.

В связи с преобладанием пищевых добавок CS на рынке важно иметь точный и воспроизводимый аналитический метод для количественного определения CS в этих продуктах.Был разработан и валидирован ионно-парный метод ЖХ-УФ с обращенной фазой, использующий ферментативный гидролиз CS. Метод использует водную экстракцию с последующим гидролизом CS ферментом хондроитиназой AC II до ненасыщенных дисахаридов. Затем ненасыщенные дисахариды разделяют и количественно определяют с помощью ЖХ с градиентным элюированием и ионно-парным методом с УФ-детектированием при 240 нм. Были продемонстрированы точность, воспроизводимость, линейность, диапазон, селективность и устойчивость метода.

Результаты и обсуждение

Общее содержание CS рассчитывают как сумму отдельных дисахаридов, образующихся в результате ферментативного гидролиза с использованием фермента хондроитиназы AC II.Из-за высокой цены и ограниченных количеств ди- и трисульфатных эталонных стандартов эти компоненты были количественно определены относительно моносульфатных эталонных стандартов с использованием поправочного коэффициента молекулярной массы, поскольку молекулы должны иметь одинаковую молярную поглощательную способность при 240 нм.

Селективность

Селективность метода была продемонстрирована путем приготовления смесей CS в сочетании с другими ингредиентами, присутствующими в типичных пищевых добавках, которые могут мешать анализу.Эти ингредиенты включали двухвалентные минералы сульфат кальция, хлорид магния, хлорид цинка и сульфат меди, поскольку считается, что некоторые двухвалентные металлы могут вызывать деактивацию фермента хондроитиназы. Другие ингредиенты, включенные в исследование селективности, включали гидрохлорид глюкозамина, МСМ, хлорид хрома (III), дерматансульфат, каррагинан и ГК.

представляет смеси, использованные в исследовании селективности. Рассчитывали процент извлечения CS из этих смесей.Никаких наблюдаемых помех не было обнаружено ни для одного из ингредиентов, за исключением ГК. Хондроитиназа AC II расщепляет HA до дисахаридной единицы ΔDi-0S HA , стереоизомера ΔDi-0S, полученного из CS, который не может быть разделен хроматографическим методом. Поскольку ΔDi-0S HA является единственным дисахаридом, полученным из ГК, его присутствие в образцах обычно можно определить по очень высокому соотношению ΔDi-0S к другим дисахаридам. Поскольку ГК значительно дороже, чем CS, она не считается источником экономической фальсификации.

Таблица 6

хлорид магния хлорид цинка сульфат меди

2

Linearity

A 5-точечная калибровочная кривая, покрывающая примерно 2 порядка величина в диапазоне концентраций генерировалась для каждого дня анализа. Линейную регрессию использовали для расчета наклона и y – точки пересечения стандартной кривой для каждого дисахарида. Определяли коэффициент корреляции и остатки каждой стандартной кривой для каждого дня.Данные показали, что стандартные кривые были линейными от концентрации примерно от 0,2 до примерно 10 мкг/мл для ΔDi-0S, примерно от 1,4 до 70 мкг/мл для ΔDi-4S и примерно от 2 до 100 мкг/мл для ΔDi-0S. 6С. суммирует данные о линейности. представляет типичный график остатков для ΔDi-6S с остатками, выраженными в процентах. Остаточный график не показывает никакой тенденции; самый большой остаток находится при самой низкой концентрации, которая близка к пределу количественного определения для метода.

График остаточной линейности Δ Di-6S.

Таблица 7

CS добавляют, мг Другие ингредиенты мг CS найдено Recovery,%
288,7 сульфата кальция 244,8 281 97,3
523,2
289,0
55.2
Глюкозамин HCl ( 407,0
МСМ 244,8
226,3 хрома (III), хлорид 79,8 226 226 100
152.4 Dermatan Sulfate 45.5 155 155 102
152.4 Carrageenan 40.5 152 99.7 99.7
0.0 25.3.4 25.3 B C NA C
%
Склон у- Перехват б г гр РСД д ,
ΔDi-0S 17087 424 424 0.99997 1.3
Δdi-4S -12931 -12931 0. 2,5
Δdi-6S 14507 -9912 0.9998 1.1

Точность

Исходный материал CS

Гепарин использовали в качестве отрицательного контроля в исследовании извлечения всплеска сырья из-за его сходной химической структуры с CS и его доступности. CS добавляли в гепарин на уровнях, соответствующих примерно 50, 100 и 200% массы гепарина или 33, 50 и 60% от общей массы CS + гепарин. Эти количества также соответствовали 50, 100 и 200% количества CS, которое взвешивалось бы при типичной пробоподготовке.Рассчитывали количество каждого дисахарида и общее количество CS. Исследование восстановления спайка было повторено еще на 2 дня для получения данных о воспроизводимости. Результаты представлены в . Извлечение рассчитывали на основе результатов исследования повторяемости для исходного материала CS бычьей трахеи 92,36%. Среднее извлечение колебалось от 100,8 до 101,6%, а общее относительное стандартное отклонение от 0,98 до 2,84%, что свидетельствует о превосходном извлечении и воспроизводимости исходного материала. Хотя тесты и выявили различия в средних значениях по дням для исследования восстановления, это в первую очередь было связано с чрезвычайно узкими результатами в течение дня.

Таблица 8

CS CS Recovery

A

Уровень 1 Уровень 2 Уровень 3 Номинальная сумма гепарина добавлена, MG 200 200 200 Номинальная сумма CS Добавлена, MG 100 200 300 Номинальная концентрация CS,% 33 50 60 Recovery,% 101 .6 101.1 101.1 100.8 RSD,% 2.8 1.8 0.98 0.98 0.98 0.98 82 0 Диетические добавки

Широко-восстановительные исследования использовались для определения восстановления CS из комплексной пищевой матрицы. Коммерческий таблетированный продукт, содержащий как глюкозамин HCl, так и метилсульфонилметан, которые обычно встречаются в добавках, содержащих CS, был выбран в качестве отрицательного контроля (матричный бланк). CS добавляли в порошкообразный материал таблетки на уровнях, соответствующих 20, 40 и 60% массы отрицательного контроля, или 16.7, 28,6 и 37,5% от общей массы. Эти значения соответствуют 50, 100 и 150% от количества CS, которое было бы обнаружено в типичной пробоподготовке. Рассчитывали количество каждого дисахарида и общее количество CS. Исследование восстановления спайка было повторено еще на 2 дня для получения данных о воспроизводимости. обобщает результаты точности исследования восстановления пика пищевой добавки. Среднее извлечение CS составляло примерно 105–106 % для всех 3 уровней с RSD в диапазоне 2,0–3,5 %.

Таблица 9

Готовый продукт Recovery A

Уровень 1 Уровень 2 Уровень 3 Номинальная сумма негативного контроля добавлена, MG B 500 500 500 9 500 Номинальное количество CS добавлено, MG 100 200 300 300 Номинальная концентрация CS,% 16.7 28.6 28.6 37.5 Recovery,% 105.6 105.4 105.8 RSD,% 2.0 3.5 3,1

3

Повторяющиеся

В течение дня Для каждого из дисахаридов рассчитывали среднесуточные и суммарные стандартные отклонения, а также общее содержание ХС с использованием однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA) с уровнем значимости (α-значение) 0.5 (95% доверительный интервал). Метод показал очень хорошую воспроизводимость для общего CS в каждом материале. RSD повторяемости варьировались от 1,60% для исходного материала CS из трахеи крупного рогатого скота до 4,72% для готового продукта многокомпонентной твердой капсулы. Коэффициент Горвица (HorRat) может быть полезным показателем эффективности метода в отношении точности и представляет собой отношение наблюдаемого RSD к прогнозируемому RSD (23, 25). Прогнозируемое относительное стандартное отклонение рассчитывается как 2C -0,15 , где C представляет собой среднюю концентрацию аналита в матрице.Первоначально разработанный с использованием межлабораторного стандартного стандартного отклонения (RSD R ), HorRat недавно был применен для однолабораторной валидации (SLV; RSD r ; 25). Хотя считается, что значения HorRat неприменимы к ферментативным методам или полимерным материалам (23), они были рассчитаны для сравнения с традиционными методами для низкомолекулярных соединений. Значения HorRat варьировались от 0,79 до 2,25. суммирует результаты повторяемости для общего CS в каждом материале. Результаты представляют собой среднее значение для всех 12 приготовленных образцов.

Таблица 10

N 0 2
N B B в течение дня SD C C между вступлением SD C Total SD C Total RSD,% PRSD D Horrat
A 12 12 923,6 8.31 12.2 14.8 1.60 2,02 0,79
B 12 740,4 5,55 34,5 34,9 4,72 2,09 2,25
С 12 21,70 0,340 0.943 0.943 1.00 4.62 3.55 1.30
D
D 12 202,6 2.22 8.92 9.2 4.54 2.54 2.54 1.79
E 12 210,9 3.69 8.67 9.4 9.4 4,47 2.53 1.77
1,77

Однодневные исследования повторяемости были проведены на материалах 6-9 (), чтобы продемонстрировать применимость метода к этим материалам. Все материалы показали превосходную воспроизводимость в течение дня, что согласуется с результатами, полученными с другим материалом (). Хрящ акулы CS был единственным сырьем, содержащим ди- и трисульфатные дисахариды.Они составляли примерно 20% от общего количества CS. Было обнаружено, что из протестированных готовых продуктов только Материал 4 () содержит ди- и трисульфатные дисахариды, что указывает на то, что этот материал может содержать трисульфат из акульего хряща. В жидкой пищевой добавке (Материал 9 в ) CS не обнаружен. Затем в этот материал добавляли сырье CS из трахеи крупного рогатого скота в ожидаемой концентрации с превосходным извлечением (). Это ограниченное исследование восстановления выброса на этом материале показывает, что продукт фактически не содержал какого-либо измеримого CS и что метод применим к жидким добавкам.

Таблица 11

Внутренняя Повторяемость результатов

N B Результат C C SD C RSD,%
F 4 887 887 2.2 0.25
G
G 4 842 9.2 1.1
H 4 176.2 3.14 3.14 1.8
4 ND D NA E NA
NA

Таблица 12

Спос для восстановления из жидких пищевых добавок

9 99.6 2
сумма CS добавлено, MG сумма CS восстановлена, MG Recovery,%
838 835
99.6
99.6
99.6

Продолжительность прочности

A_ может повлиять на результаты анализа.Было проведено восемь экспериментов с изменением каждой из 7 переменных в определенных комбинациях высокого/низкого уровня (24). Переменные включали время обработки образца ультразвуком, вес образца, время гидролиза фермента, концентрацию фермента, рН ферментного буфера, объем инъекции и длину волны детектора. Испытание на устойчивость по Юдену дает безразмерные значения, которые дают представление об относительном влиянии каждого фактора на результаты. Выбросы в этих результатах указывают, какие факторы влияют на результаты метода и, следовательно, должны контролироваться или отслеживаться.Результаты испытания стойкости по Юдену () показывают, что ни один из исследованных факторов не является критическим для результатов в исследованных диапазонах, что указывает на очень ненадежный метод. Общий RSD для всех 8 экспериментов составил 1,1%.

Стабильность

Стабильность раствора фермента была продемонстрирована в течение 1 недели. Образец сырья КС трахеи крупного рогатого скота обрабатывали раствором фермента, который хранился при температуре -20°С в течение 1 недели. Для этого образца было получено значение 91,0% CS по сравнению со средним результатом 92.35%, полученное во время исследования прецизионности с использованием свежеприготовленного фермента, для извлечения 98,5%.

Один из препаратов исходного материала CS трахеи крупного рогатого скота из исследования воспроизводимости был повторно протестирован через 24 часа, чтобы продемонстрировать стабильность раствора образца. Восстановление составило 99,8% через 24 часа, что указывает на то, что раствор гидролизованного образца можно хранить в течение 24 часов при комнатной температуре перед анализом.

Профили дисахаридов

Средние результаты для дисахаридов, образующихся в результате ферментативного гидролиза CS для 3 исходных материалов, использованных в валидационном исследовании (бычья трахея, свиной и хрящ акулы), представлены в .Каждый материал дает отчетливый дисахаридный профиль, аналогичный тому, что Karamanos et al. найдено (18), однако также наблюдались различия. Например, в исходном материале CS трахеи крупного рогатого скота не было обнаружено дисульфатированных дисахаридов, в то время как Karamanos et al. обнаружено примерно 10% дисульфатированных дисахаридов. Хотя кажется, что дисахаридный профиль может помочь в идентификации источника сырья CS, в настоящее время недостаточно данных для установления репрезентативных соотношений для каждого из материалов.

Таблица 13

бычьей трахеи Свиной Акулий хрящ
ΔDi-0S 6,67 (2,06) 5,28 (0,176) 2,92 (0,081)
ΔDi-4S 53,8 (0,91) 62.9 (0.115) 28.2 (0.275)
Δdi-6S 31.9 (0.66) 20,5 (0.200) 38.9 (1.11)
ΔDi-di(2,6)S НД б НД 1.04 (0.084)
ΔDi-Di (4,6) S ND ND 13.2 (0.163)
ΔDi-Tri (2,4,6) S ND ND ND

Информация для участников

David JI, Analytical Laboratories in Anaheim, Inc., 2951 Saturn St, Unit C, Brea, CA 92821.

Mark Roman, Tampa Bay Analytical Research, Inc., Inc. 931, Safety Harbour, FL 34695.

Джозеф Чжоу, NOW Foods Inc., 395 S. Glen Ellyn Rd, Bloomington, IL 60108.

Jana Hildreth, Blaze Science Industries, 4547 W. 171st St, Lawndale, CA

.

Хондроитин сульфат – обзор безклеточного матрикса

Естественный внеклеточный матрикс сердца, в котором находятся сердечные клетки, предлагает наилучшую микросреду для сердечных клеток [249]. ВКМ сердца состоит из различных изоформ коллагена и других компонентов ВКМ, таких как эластин, ламинин, фибронектин, гиалуронан, гликозаминогликаны, хондроитинсульфатпротеогликаны, гепаринсульфат и различные факторы роста [119].Таким образом, бесклеточный ЕСМ сердца, который не вызывает иммунологических реакций, должен быть идеальным каркасом для приложений инженерии тканей сердца. Врожденные белки и гликозаминогликаны внутри бесклеточного внеклеточного матрикса сердца могут обеспечивать клеточную передачу сигналов для регуляции клеточного поведения, такого как рост, выживание и дифференцировка клеток, посредством взаимодействия клетка-материал [249, 250]. Более того, сосудистая структура бесклеточного ВКМ может использоваться для эффективного транспорта кислорода и питательных веществ.

Процесс децеллюляризации включает устранение клеточных компонентов в любой ткани или органе для получения ВКМ с сохранением исходной структуры ВКМ.Чтобы способствовать регенерации сердца, важно поддерживать естественную ультраструктуру и состав сердечного ECM (механические и биохимические особенности сердца) во время процесса децеллюляризации. Как правило, ткань сердца последовательно обрабатывают 1% додецилсульфатом натрия (SDS), TritonX-100 и дезоксирибонуклеазой I (ДНКазой I) для получения децеллюляризованного ВКМ сердца [158, 249, 251]. Некоторые исследования продемонстрировали клинический потенциал и возможность использования гидрогелей децеллюляризованного миокардиального матрикса с клетками или без них для ускорения восстановления после ИМ [119, 139, 158].

Для создания децеллюляризированных матричных гидрогелей для инъекций необходимо выполнить несколько этапов, включающих децеллюляризацию, измельчение, ресуспендирование и, наконец, нейтрализацию. Полученный вязкий раствор называется «солюбилизированным ЕСМ» [119, 252, 253]. Карен Л. Кристман и др. сообщили, что децеллюляризованная ткань миокарда свиньи, а также ткань перикарда свиньи и человека была обработана для создания солюбилизированной жидкости со способностью превращаться в гель при физиологической температуре как in vitro, так и in vivo при инъекции в миокард крысы.Кроме того, исследования in vivo показали, что три материала (то есть ткань миокарда свиньи, ткань свиньи и ткань перикарда человека) вызывали сопоставимую степень инфильтрации сосудистых клеток и образования артериол через 2 недели после инъекции. Клетки c-Kit также были обнаружены в области инъекции, что указывает на потенциальную мобилизацию стволовых клеток в матричный материал. Эти исследования демонстрируют осуществимость и потенциал природного инъекционного материала, который был разработан специально для имитации естественного внеклеточного матрикса миокарда в качестве нового источника аутологичных каркасов для инженерии тканей сердца [252, 254].

Кристман и его коллеги установили безопасность и эффективность этих инъекционных биоматериалов в модельных исследованиях на крупных и мелких животных, специально разработанных для сердца, которые имитировали клинические условия. Они продемонстрировали, что введение биоматериалов в просвет/стенки левого желудочка на модели ИМ крысы увеличивало количество эндогенных кардиомиоцитов в области инфаркта и поддерживало сердечную функцию. Например, свиней, перенесших инфаркт, лечили чрескожными трансэндокардиальными инъекциями гидрогеля децеллюляризованного матрикса через 2 недели после ИМ и использовали гистологию для оценки удержания материала.Эхокардиография показала улучшение сердечной функции, объема желудочков и общей оценки движения стенок [128, 131] (рис. 4.4).

Рисунок 4.4. Резюме использования инъекционных гидрогелей децеллюляризованного миокардиального матрикса для фундаментальных научных и доклинических исследований, а также планы на будущее.

Выбранные изображения перепечатаны из [255].

Бигликан и хондроитинсульфат играют ключевую роль в прочности кости за счет удержания связанной воды в минеральном матриксе кости

https://doi.org/10.1016/j.matbio.2020.09.002Получить права и содержание

Highlights

Гликозаминогликаны (ГАГ) и протеогликаны в костном матриксе регулируют состояние гидратации на уровне тканей и механическое поведение.

Удаление бигликана (Bgn) снижало количество ГАГ, хондроитинсульфата (CS) и связанной воды в костном матриксе мыши.

Bgn Дефицит связан со снижением прочности костей в зависимости от связанной воды.

Добавление CS улучшило связанную воду и прочность костей у мышей WT, но не у мышей Bgn KO.

Bgn и CS играют ключевую роль в удержании связанной воды в костном матриксе, тем самым придавая кости прочность.

Abstract

Недавние исследования in vitro показывают, что гликозаминогликаны (ГАГ) и протеогликаны (ПГ) в костном матриксе могут функционально участвовать в формировании прочности кости на уровне ткани.В этом исследовании мы показали влияние бигликана (Bgn), небольшого богатого лейцином протеогликана, обогащенного внеклеточным матриксом кости, и связанного с ним подтипа ГАГ, хондроитинсульфата (CS), на прочность кости in vivo , используя дикие -тип (WT) и мыши с дефицитом Bgn . Количество общих ГАГ и CS в минерализованном компартменте костного матрикса мыши Bgn KO значительно уменьшилось, что связано со снижением прочности кости, по сравнению с мышами WT.Однако такие различия между мышами WT и Bgn KO уменьшались после удаления связанной воды из костного матрикса. Кроме того, CS был идентифицирован как основной подтип костного матрикса. Затем мы добавили CS мышам WT и Bgn KO, чтобы проверить, могут ли дополнительные GAG улучшить прочность кости на уровне ткани. После внутрикожного введения CS прочность кости WT значительно улучшилась, а количество ГАГ и связанной воды в костном матриксе увеличилось, в то время как такого улучшения не наблюдалось у мышей Bgn KO или при добавлении дерматансульфата (DS).Кроме того, мыши WT, получавшие CS, демонстрировали более высокую минеральную плотность кости и сниженный остеокластогенез. Интересно, что кость Bgn KO не показала таких различий независимо от внутрикожного введения CS. Таким образом, результаты этого исследования позволяют предположить, что Bgn и CS в костном матриксе играют ключевую роль в придании прочности кости, скорее всего, через удержание связанной воды в костном матриксе. Кроме того, добавление CS улучшает прочность костей на моделях мышей.

Ключевые слова

Бигликан

Хондроитина сульфат

Костный матрикс

Прочность кости

Связанная вода

Рекомендованные статьиСсылки на статьи (0)

© The). Опубликовано Elsevier BV

Рекомендованные статьи

Ссылки на статьи

Ингибитор синтеза хондроитинсульфата протеогликана способствует ремиелинизации центральной нервной системы Комитет по уходу за животными Университета Калгари.Смешанные глиальные культуры были получены из головного мозга новорожденных мышей CD-1

46,47 . Постнатальный день (P) 0–P2 детенышей (10–12 в помете) смешанного пола умерщвляли обезглавливанием, а мозг удаляли из черепа и помещали в сбалансированный солевой раствор Хэнка (HBSS) на льду. Обе коры были изолированы от конечного мозга, а вышележащие мозговые оболочки были удалены с помощью тонких щипцов. Кортикальные ткани всех мышей были объединены и измельчены скальпелем примерно до 1 мм 3 штук.Ткань собирали в центрифужную пробирку объемом 50 мл, содержащую 350 мкл HBSS на мозг.

Ткань была механически диссоциирована микропипеткой на 1  мл и подогрета до 37 °C. Готовили расщепляющий раствор, содержащий 1,54 мг мл -1 папаина, 360 мкг мл -1 L-цистеина и 60 мг мл -1 ДНКазы I. К диссоциированной ткани добавляли по 75 мкл раствора для переваривания на мозг на 30 мин при 37°С. После переваривания клетки растирали в микропипетке на 1 мл и реакцию останавливали, заполняя центрифужную пробирку смешанной глиальной средой (MGM, среда Игла, модифицированная Дульбекко (DMEM), содержащая 10 % термоинактивированной фетальной телячьей сыворотки, 1 % L- глутамин, 1% пируват натрия и 1% пенициллин/стрептомицин).Суспензию одиночных клеток центрифугировали при 1200 об/мин. на 10 мин. После декантации среды осадок ресуспендировали с 3 мл MGM и разделяли на 3 колбы для тканевых культур, покрытых поли-L-лизином T-75, содержащих 9 мл MGM. Затем клетки помещали в инкубатор для тканевых культур с температурой 37 °C и 8,5% CO 2 на 7–8 дней, меняя среду примерно через 1, 4 и 7 дней. Индивидуальные типы клеток обогащали посредством дифференциальных стадий адгезии, как описано ниже.

Обогащение клеток-предшественников олигодендроцитов

Смешанные культуры помещали на орбитальный шейкер при 220 r.вечера. при 37 °C и 5% CO 2 в течение ночи для удаления слабо прикрепленных клеток (OPC, микроглии и других загрязняющих клеток) из сильно прикрепленных астроцитов. Среду собирали и добавляли в чашку для культивирования тканей диаметром 100 мм и помещали при 37°С и 5% CO 2 на 30 мин, чтобы обеспечить предпочтительную адгезию микроглии. Среду собирали во второй раз, теперь она была обогащена OPC, и центрифугировали при 1200 об/мин. в течение 10 минут в MGM. После декантации среды осадок ресуспендировали в среде OPC 46 и определяли общее количество клеток с помощью гемоцитометра.Затем OPC высевали на чашки в различных экспериментальных условиях, как описано ниже.

Обогащение астроцитов

После удаления свободно прилипших клеток в колбы Т-75 добавляли свежий MGM, клетки помещали в инкубатор при 37 °C и 5% CO 2 и использовали в течение нескольких дней для предотвращения повторной популяции OPCs и микроглии. Астроциты удаляли из колб Т-75 путем переваривания раствором, содержащим 0,4% трипсина, 33 мг мл -1 ДНКазы I и 0.1 мг мл −1 ЭДТА при 37 °C и 5% CO 2 в течение 5 мин. Реакцию нейтрализовали избытком MGM, клетки собирали и центрифугировали при 1200 об/мин. на 10 мин. После декантации среды осадок ресуспендировали в MGM и подсчитывали количество клеток с помощью гемоцитометра. Затем астроциты высевали в различных экспериментальных условиях, как описано ниже.

Первичные астроциты человека

Мозговая ткань 18–20-недельного плода, абортированного терапевтическим путем, использовалась в соответствии с этическим одобрением Совета по этике исследований Университета Калгари.Астроциты были получены и очищены путем диссоциации ткани на отдельные клетки, как описано в другом месте 48 . Клетки высевали в колбы Т-75, покрытые поли-L-орнитином (10 мкг мл -1), в минимальную основную среду с добавлением 10% эмбриональной бычьей сыворотки, 1 мМ пирувата натрия, 0,1% декстрозы и 1% пенициллина. /стрептомицин. Культуры пассировали семь-восемь раз в течение 4-5 недель, истощая нейроны и достигая чистоты астроцитов 95%.

Рост OPC на очищенной смеси CSPG

Для определения влияния CSPG на рост OPC in vitro плоскодонные 96-луночные планшеты сначала покрывали 10 мкг мл -1 поли-L-лизина в течение ночи с последующим ополаскиванием водой.Очищенные CSPG (Millipore CC-117), коммерческую смесь, содержащую нейрокан, фосфакан, версикан и аггрекан, наносили на 96-луночные планшеты в концентрации 10 нг мл –1 –10 мкг мл –1 , разбавленных в стерильной водой в течение 3–4 ч с последующим ополаскиванием водой. Контрольные лунки содержали только поли-L-лизин или бычий сывороточный альбумин (1–10 мкг мл -1 ). Обогащенные OPC высевали с плотностью 5,0–10,0 × 10 4 клеток на лунку в среде OPC ( n = 4 лунки на условие), и планшеты инкубировали при 37 °C и 8.5% CO 2 в течение 18–24 ч для большинства экспериментов. Клетки фиксировали 4% охлажденным льдом параформальдегидом при 4°С в течение 10 мин, промывали фосфатно-солевым буфером (PBS) и хранили при 4°С до обработки для иммуноцитохимии. В других экспериментах OPC высевали на секретируемый астроцитами ECM.

Иммуноцитохимия

Все этапы проводились при комнатной температуре. Для внутриклеточных белков, таких как GFAP в астроцитах, клетки пермеабилизировали с использованием 0,25% Triton X-100 в PBS в течение 10 мин.Зондирование мембранных компонентов, таких как Iba1 на микроглии и сульфатид O4 на клетках линии олигодендроцитов, не требовало пермеабилизации. Неспецифические взаимодействия антител блокировали с помощью 20% нормальной козьей сыворотки в PBS в течение 60 мин. Первичные антитела разводили нормальной козьей сывороткой и инкубировали в течение 60 мин. Клетки промывали PBS и добавляли вторичные антитела, разведенные в нормальной козьей сыворотке, вместе с ядерным желтым (разведение 1:1000) для обнаружения ядер клеток на 60 мин. Клетки промывали PBS и хранили при 4 °C в PBS до готовности к визуализации.Первичные антитела, используемые для иммуноцитохимии, перечислены в дополнительной таблице 1.

Сбор данных ImageXpress и анализ MetaXpress

Планшеты, содержащие клетки, обработанные для иммуноцитохимии, были визуализированы с помощью системы визуализации высокого содержания Molecular Devices ImageXpress. Изображения собирали с 10-кратным увеличением из 12 участков на лунку с соответствующими длинами волн поглощения и испускания для каждого вторичного антитела. После получения изображения обрабатывались с помощью программного обеспечения для анализа MetaXpress.Первым использованным программным модулем была «многоволновая оценка клеток», которая использует интенсивность флуоресценции и координаты x y для измерения совместной локализации маркеров из разных каналов в отдельных клетках. Вторым используемым программным модулем был «рост нейритов», который использует интенсивность флуоресценции и введенную пользователем оценку размеров клеток и процессов для количественного определения количества клеток на поле, а также меру роста процессов на клетку. Данные из 12 изображений были усреднены до одной точки данных для каждой лунки повторения 36 .

Анализ живых-мертвых клеток

Жизнеспособность астроцитов в присутствии различных фармакологических агентов определяли с помощью анализа живых-мертвых клеток. К клеткам, растущим в MGM, на 30 мин добавляли проникающий в клетки ядерный синий (разведение 1:10) и живой не проникающий в клетки йодид пропидия (10 мкг мл -1 ). Затем клетки визуализировали на машине ImageXpress и изображения анализировали с использованием многоволнового счетчика клеток MetaXpress.

Внеклеточный матрикс, секретируемый астроцитами

Для получения закрепленного ВКМ астроцитов 36 астроциты высевали с плотностью 1.0 × 10 5 клеток на лунку на плоскодонных 96-луночных планшетах, которые предварительно покрывали в течение ночи 10 мкг мл -1 поли-L-лизина с последующей промывкой водой. Клетки инкубировали при 37 °C и 5% CO 2 в течение 7 дней в MGM, меняя среду через день. Затем клетки промывали PBS и обрабатывали версеном в течение 30 мин при 37°C и 5% CO 2 с использованием микропипетки на 200 мкл для удаления клеток. Клеточный дебрис удаляли промывкой PBS и подтверждали под фазово-контрастным микроскопом.Депонированный ECM, прикрепленный к 96-луночному планшету, гидратировали с помощью PBS при 4 ° C до тех пор, пока он не был готов к засеванию OPC.

В некоторых экспериментах ECM астроцитов собирали в средах 34 . Это было достигнуто путем посева астроцитов в количестве 1,0 × 10 6 клеток на лунку шестилуночных планшетов, не покрытых поли-L-лизином, чтобы свести к минимуму прилипание секретируемого ECM к дну планшета. Клетки выдерживали в течение 2 дней без смены среды. Затем среды объединяли из трех лунок в трех экземплярах (∼5.всего 5  мл) и центрифугировали при 5,0 × 10 3 × g в центробежном фильтре с молекулярной массой с отсечкой 100 кДа, концентрировали в 10–20 раз и хранили при –80 °C в присутствии коктейля ингибиторов протеаз.

Вестерн-блоттинг

Для лизатов спинного мозга мышей животных сначала умерщвляли удушением углекислым газом, после чего спинной мозг быстро извлекали и быстро замораживали в жидком азоте. Кусочек ткани диаметром 2 мм, содержащий место инъекции лизолецитина, лизировали в 10-кратном объеме 40 мМ Трис-HCL, рН 7.6, содержащий 40 мМ ацетата натрия и смесь ингибиторов протеаз с 5-секундным импульсом ультразвукового прибора 49 . Разрушенную ткань центрифугировали при 14,0 × 10 3 × g в течение 10 мин, супернатант переносили в новую пробирку. Общий белок определяли количественно с использованием анализа Брэдфорда.

Для вестерн-блоттинга некоторые образцы сначала расщепляли 0,2 ЕД мл -1 хондроитиназы ABC в течение 3–24 часов при 37 °C для удаления боковых цепей хондроитинсульфата.Образцы подвергали тепловой денатурации с помощью SDS при 95 °C в течение 5 мин и загружали в готовые гели с содержанием трис-ацетата 3–8%. Гели подвергали электрофорезу при 150 В в течение 60 мин и переносили на поливинилиденфторидную мембрану 0,2 мкм при 250 мА в течение 60 мин. Мембраны блокировали 10% обезжиренным молоком в 0,5 твине в трис-буферном солевом растворе (TBS-T), а первичные антитела (дополнительная таблица 1) инкубировали в течение ночи при 4 °C. Мембраны промывали 5 × 5 мин TBS-T и вторичные антитела, конъюгированные с HRP, инкубировали в течение 120 мин.Мембраны снова промывали TBS-T в течение 5 × 5 мин, подвергали усиленной хемилюминесценции и проявляли. Изображения были обрезаны для представления на рисунках 3, 5, дополнительных рисунках 4 и 5, а полноразмерные версии представлены на дополнительных рисунках 8–11.

Пролиферация спленоцитов

Селезенки выделяли из 8-10-недельных самок мышей C57BL/6 и гомогенизировали. Клетки выделяли градиентом фиколла и центрифугировали в течение 30 мин при 1800 об/мин. Суспензию клеток удаляли и клетки однократно промывали PBS.Затем клеточный осадок ресуспендировали в среде Roswell Park Memorial Institute, содержащей 10% фетальной бычьей сыворотки, 1% пенициллина/стрептомицина, 1% пирувата натрия и 1% L-глутамина. Живые клетки подсчитывали с помощью трипанового синего, и клетки высевали в количестве 2,5 × 10 5 клеток на лунку в круглодонный 96-луночный планшет и активировали 1000 нг мл -1 анти-CD3, связанного с планшетом, и 1000 нг мл -1 анти-CD28, суспендированные в среде для предпочтительной активации Т-лимфоцитов.Добавляли фторозамин в конечных концентрациях 1, 10 и 100 мкМ. Клетки выдерживали при 37°С и 5% СО 2 в течение 30 ч, после чего добавляли 10 мкл 3 H-тимидина в концентрации 1 мкКи на лунку в течение 18 ч. Среду, содержащую тимидин, собирали на фильтрующие маты с помощью устройства для сбора клеток, и матам давали высохнуть в течение 24 часов. Результаты считывали с помощью жидкостных сцинтилляций.

Демиелинизация лизолецитином

Все экспериментов in vivo были проведены на самках мышей C57BL/6 в возрасте 8–12 недель в соответствии с этическими рекомендациями по уходу за животными Комитета по уходу за животными Университета Калгари.Для экспериментов отбирали от трех до шести животных в группе на основании прошлого опыта групповой изменчивости. Экспериментальную демиелинизацию производили с использованием токсина лизолецитина, как описано ранее 37 . Животных анестезировали внутрибрюшинной инъекцией кетамина (200 мг кг -1 ) и ксилазина (10 мг кг -1 ). Спину брили бритвой, а обрезки волос удаляли 70% этанолом. Операционное поле протирали йодом, бупренорфином (0.05 мг кг -1 ) вводили подкожно в качестве анальгетика. После помещения животного в стереотаксическую рамку выполняли срединный разрез с последующим отделением подлежащей мышечной и жировой ткани с помощью ретракторов. Костный отросток позвонков грудного уровня (T) 2 был идентифицирован как ориентир, а соединительная ткань между T3 и T4 была удалена пружинными ножницами, обнажая спинной мозг. Затем толстый слой твердой мозговой оболочки очищали с помощью латеральных соскобов металлической иглой 30-го калибра.Границы серого и белого вещества по обе стороны от дорсальных столбов использовались для визуализации приблизительной средней линии спинного мозга.

Спинной мозг прокалывали по обе стороны от средней линии либо иглой 34G со скошенной кромкой под углом 12°, либо вытянутым стеклянным капилляром, присоединенным к шприцу на 10 мкл, наполненному 1% лизолецитином в PBS. Иглы опускали на 1,3 мм от дорсальной поверхности спинного мозга под углом 5° для позиционирования в вентролатеральном белом веществе. Затем вводили лизолецитин со скоростью 0.25 мкл в минуту в течение 2 мин, общий объем 0,50 мкл. Иглы удерживали на месте в течение 2 мин для предотвращения обратного потока раствора. Затем иглы втягивали, а места разрезов зашивали. Животных содержали в отапливаемых восстановительных камерах до тех пор, пока они не очнулись от анестезии и не вернулись в свои клетки.

Имитационные операции выполняли так же, как описано, с инъекцией PBS вместо лизолецитина в вентральное белое вещество.

Гистология

Для изучения различных аспектов реакции де- и ремиелинизации животных забивали через 7 или 14 дней после инъекции лизолецитина.Животным транскардиально перфузировали 20 мл PBS комнатной температуры, а затем 20 мл охлажденного льдом 4% параформальдегида в PBS. Спинной мозг выделяли и постфиксировали в 4% параформальдегиде в течение ночи при 4°С, криозащитили 30% сахарозой при 4°С в течение 72 ч, разрезали на кусочки 3 мм с местом инъекции в центре и замораживали в ОСТ-составе в течение 72 ч. формы (до пяти шнуров на форму), покоящиеся на смеси сухого льда и 2-метилбутана. Блоки хранили при температуре -80 °C до готовности к разделке.

Шнуры были разрезаны на корональные срезы толщиной 20 мкм в серии из 10 наборов предметных стекол, так что соседние срезы на одном предметном стекле находились на расстоянии 200 микрон друг от друга.Предметные стекла хранили при температуре -20 °C до тех пор, пока они не были готовы к обработке для гистологии.

Эриохромцианин

Первую серию тканей подвергали воздействию эриохромцианина, который окрашивает миелиновые липиды в синий цвет. Все этапы проводились при комнатной температуре. Предметные стекла сушили на воздухе в течение 30 минут, затем помещали в очищающее средство на 1 минуту с последующей регидратацией в растворах этанола (100%, 95%, 90%, 70%, 50%, вода) в течение 1 минуты каждый. Предметные стекла помещали в раствор эриохромцианина на 15 мин, промывали водой в течение 1 мин, дифференцировали с 0.5% гидроксида аммония в течение 10 с и снова промывают водой в течение 1 мин. Срезы обезвоживали в градуированных растворах этанола (вода, 50%, 70%, 90%, 95%, 100%), помещали в очищающий агент на 1 мин и закрывали покровным стеклом с монтажной средой. Изображения были получены на светлопольном микроскопе Olympus, чтобы визуализировать размер и расположение поражений, чтобы направлять получение изображений с другими сериями тканей, используемыми для иммуногистохимии.

Иммуногистохимия

Предметные стекла, размороженные при комнатной температуре, гидратировали PBS.Ткань пермеабилизировали 0,25% Triton X-100 в PBS в течение 30 мин и промывали PBS. В случаях окрашивания основного белка CSPG добавляли хондроитиназу ABC (0,2 ед. мл -1 в PBS) на 30 минут для удаления боковых цепей хондроитинсульфата с последующей промывкой PBS. Срезы фиксировали в метаноле при -20°С в течение 10 мин, промывали PBS и блокировали 10% лошадиной сывороткой, содержащей 1% бычьего сывороточного альбумина и 0,1% холодного желатина рыбьей кожи. Первичные антитела (дополнительная таблица 1) инкубировали в течение ночи с последующей промывкой PBS; и вторичные антитела вместе с ядерным желтым (1:1000) инкубировали в течение 60 мин с последующим промыванием PBS и заливкой гельватолом.Изображения (× 10 и × 60) были получены на конфокальном микроскопе Olympus FluoView FV10i.

Полутонкие срезы

Животных умерщвляли, как описано выше, перфузией 2,5% глутарового альдегида и 4% параформальдегида в PBS. Спинной мозг удаляли и постфиксировали в течение ночи при 4°С в том же фиксаторе. Шнуры трижды промывали 0,1 М какодилатом, рН 7,2, а затем фиксировали 1% четырехокисью осмия в 0,1 М какодилате в течение 60 мин при комнатной температуре. Шнуры были обезвожены в этаноле и залиты эпоновой смолой.Блоки вырезали на ультрамикротоме Leica EM UC6, отбирая нити через каждые 500 мкм. Срезы кратковременно окрашивали 1% раствором толуидинового синего и 2% раствором буры. Срезы покрывали акрилолом и фотографировали с увеличением × 40 и × 100 с помощью светлопольного микроскопа Olympus. Относительная степень присутствующей ремиелинизации оценивалась исследователем вслепую. Затем ImageJ использовался для количественной оценки области поражения, занятой миелинизированными аксонами, другим слепым исследователем; также была определена общая площадь эпицентрального поражения.

Экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит

Самкам мышей C57BL/6 в возрасте от восьми до двенадцати недель анестезировали внутрибрюшинной инъекцией кетамина (200 мг кг -1 ) и ксилазина (10 мг кг -1). Пептид миелинового олигодендроцитного гликопротеина (MOG) 35–55 был получен из пептидного центра Университета Калгари. Количество 50 мкг MOG на животное эмульгировали в 100 мкл полного адъюванта Фрейнда (CFA) с добавлением Mycobacterium tuberculosis. Мыши получили одну инъекцию по 50 мкл в задний бок, в результате чего в общей сложности было введено 50 мкг MOG в 100 мкл эмульсии. Затем мышам внутрибрюшинно вводили 300 нг коклюшного токсина (РТх) в день иммунизации (день 0) и день 2. Всех животных ежедневно взвешивали и оценивали по ранее описанной 15-балльной шкале 50 . Вкратце, степень инвалидности хвоста, передних и задних конечностей каждой мыши оценивали индивидуально и суммировали для этого животного. Для функции хвоста 0 означает отсутствие физических признаков, 1 — частичный паралич и 2 — полный паралич.Для каждой конечности 0 баллов означает отсутствие симптомов, 1 балл — слабую и ненормальную походку, 2 балла — волочащую конечность, которая все еще может двигаться, а 3 балла — полный паралич этой конечности. Следуя этой схеме, полностью парализованному парализованному животному (с оценкой 2 по функции хвоста и по 3 по каждой конечности) будет присвоена оценка 14. Смерть, связанная с ЭАЭ, получит оценку 15.

-time полимеразная цепная реакция

Свежие сегменты шейного отдела спинного мозга извлекали из мышей EAE на 26-й день, мгновенно замораживали в жидком азоте и хранили при -80 °C.Все процедуры проводились с материалом и растворами, не содержащими РНКазы. Ткани лизировали в 1 мл тризола с использованием игл 22 G и 25 G для разрезания ДНК и тонкого измельчения образца. РНК осаждали на колонках RNeasy Mini Kit. Спектрофотометр оценивал РНК по концентрации и качеству (соотношение А260/А280). Образцы обрабатывали ДНКазой в соответствии с инструкциями производителя (Promega). РНК обратно транскрибировали в кДНК с использованием обратной транскриптазы Superscript II (Invitrogen). Все праймеры, используемые в этом исследовании, были приобретены у Qiagen: Aggrecan (QT00175364), Neurocan (QT00158823), Versican V0/V1 (QT01889475) с GAPDH в качестве домашнего контроля (QT01658692).Транскрипты количественно оценивали с помощью количественной ПЦР в реальном времени на iCycler с использованием RT2 Real Time SYBR Green/Fluorescein PCR Master Mix. Относительные уровни экспрессии между генами рассчитывали, используя метод порога сравнительного цикла, с уровнями экспрессии, нормализованными к GAPDH.

Статистика

Все статистические данные были выполнены с использованием программного обеспечения Prism 6.0. Наборы данных были проанализированы с помощью теста Стьюдента t , теста Манна-Уитни U или дисперсионного анализа с множественными сравнениями между группами с альфа 0.05.

Произошла ошибка при настройке пользовательского файла cookie

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.


Настройка браузера на прием файлов cookie

Существует множество причин, по которым файл cookie не может быть установлен правильно. Ниже приведены наиболее распространенные причины:

  • В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки браузера, чтобы принять файлы cookie, или спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
  • Ваш браузер спрашивает, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались. Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, нажмите кнопку «Назад» и примите файл cookie.
  • Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Попробуйте другой браузер, если вы подозреваете это.
  • Дата на вашем компьютере в прошлом. Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г., браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы это исправить, установите правильное время и дату на своем компьютере.
  • Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie. Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу. Предоставить доступ без файлов cookie потребует от сайта создания нового сеанса для каждой посещаемой вами страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.


Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в файле cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в файле cookie может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта. Например, сайт не может определить ваше имя электронной почты, если вы не решите ввести его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступ к остальной части вашего компьютера, и только сайт, создавший файл cookie, может его прочитать.

Медицинские устройства: данные и исследования

– 467 записей –

Биологический хирургический имплантат при комплексном восстановлении брюшной стенки: 3-летние последующие результаты многоцентрового проспективного исследования

Госсетти Ф., Зуегель Н., Джордано П., Пуллан Р., Шульд Дж., Дельрио П., Монторси М., ван Кершавер О., Леметр Дж., Гриффитс Б., Д’Амор Л.

Медицинские устройства: данные и исследования 2021, 14: 257-264

Дата публикации: 25 августа 2021 г.

Оригинальное исследование

Проспективное испытание спондилодеза крестцово-подвздошного сустава с использованием треугольных титановых имплантатов, напечатанных на 3D-принтере: 24-месячное наблюдение

Патель В., Ковальский Д., Мейер С.К., Чоудхари А., ЛаКомб Дж., Локштадт Х., Течи Ф., Лангель С., Лимони Р., Юань П., Краненбург А., Шер Д., Тендер Г.

Медицинские устройства: данные и исследования 2021, 14:211-216

Дата публикации: 29 июня 2021 г.

Дизайн, ориентированный на пользователя: разработка системы доставки RELI — недорогой, неэлектрический, пневматический инфузионный насос

Абу-Хайдар Э., Катунту Д., Бауэр Дж., Воллен А., Эйзенштейн М., Шерман-Конкл Дж., Рош А., Руффо М.

Медицинские устройства: данные и исследования 2021, 14:185-192

Дата публикации: 24 июня 2021 г.

Оценка затрат, платежей, использования медицинских услуг, а также периоперационных и послеоперационных результатов у пациентов, перенесших операцию на заднем поясничном отделе позвоночника с использованием открытых и минимально инвазивных хирургических доступов

Holy CE, Corso KA, Bowden DE, Erb MJ, Ruppenkamp JR, ​​Coombs S, Pracyk JB

Медицинские устройства: данные и исследования 2021, 14:173-183

Дата публикации: 15 июня 2021 г.

Новое устройство для измерения натяжения брюшной стенки и его значение для скрининга абдоминальной инфекции

Тан Х, Лю Д, Го И, Чжан Х, Ли И, Пэн С, Ван И, Цзян Д, Чжан Л, Ван З

Медицинские устройства: данные и исследования 2021, 14:119-131

Дата публикации: 22 апреля 2021 г.

Клинические факторы, связанные с высокой гликемической вариабельностью, определяемой коэффициентом вариации, у пациентов с сахарным диабетом 2 типа

Гомес А.М., Энао-Карильо, округ Колумбия, Табоада Л., Фуэнтес О., Лусеро О., Санко А., Робледо М.А., Муньос О., Рондон М., Гарсия-Харамильо М., Леон-Варгас Ф.

Медицинские устройства: данные и исследования 2021, 14:97-103

Дата публикации: 31 марта 2021 г.

Отчет о клинических испытаниях

Проспективное испытание спондилодеза крестцово-подвздошного сустава с использованием треугольных титановых имплантатов, напечатанных на 3D-принтере

Патель В., Ковальский Д., Мейер С.К., Чоудхари А., Локстадт Х., Течи Ф., Лангель С., Лимони Р., Юань П.С., Краненбург А., Шер Д., Тендер Г., Хиллен Т.Дж.

Медицинские устройства: данные и исследования 2020, 13:173-182

Дата публикации: 16 июня 2020 г.

Оценка протокола гликемического контроля (STAR) посредством анализа соблюдения среди пациентов отделения интенсивной терапии Малайзии

Абдул Разак А., Абу-Сама А., Абдул Разак Н.Н., Джамалудин У., Сухайми Ф., Ралиб А., Мэт Нор М.Б., Претти С., Кнопп Д.Л., Чейз Д.Г.

Медицинские устройства: данные и исследования 2020, 13:139-149

Дата публикации: 4 июня 2020 г.

Обзор

Система AngelMed Guardian® в диагностике окклюзии коронарных артерий: современные перспективы

Казми ША, Датта С., Чи Г., Нафи Т., Йи М., Калия А., Шарфаей С., Шоджаи Ф., Мирваис С., Гибсон К.М.

Медицинские устройства: данные и исследования 2020, 13:1-12

Дата публикации: 7 января 2020 г.

Использование автоматического турбидиметрического кинетического теста лизата амебоцитов Limulus для скрининга образцов диализата на наличие эндотоксинов

Учида Т., Каку Ю., Хаясака Х., Кофудзи М., Момосе Н., Миядзава Х., Уэда Ю., Ито К., Окавара С., Моришита Ю.

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2019 г., 12:429-433

Дата публикации: 7 октября 2019 г.

Отчет о клинических испытаниях

Отдаленные проспективные клинико-рентгенологические результаты после минимально инвазивного латерального спондилодеза крестцово-подвздошного сустава с использованием треугольных титановых имплантатов

Whang PG, Darr E, Meyer SC, Kovalsky D, Frank C, Lockstadt H, Limoni R, Redmond AJ, Ploska P, Oh M, Chowdhary A, Cher D, Hillen T

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2019 г., 12:411-422

Дата публикации: 26 сентября 2019 г.

Оригинальное исследование

Модельный гликемический контроль в отделении интенсивной терапии Малайзии: исследование производительности и безопасности

Абу-Самах А., Кнопп Дж.Л., Абдул Разак Н.Н., Разак А.А., Джамалудин Великобритания, Мохамад Сухейми Ф., Мд Ралиб А., Мэт Нор М.Б., Чейз Дж.Г., Претти К.Г.

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2019 г., 12:215-226

Дата публикации: 31 мая 2019 г.

Отчет о клинических испытаниях

Минимально инвазивный латеральный трансподвздошно-крестцово-подвздошный сустав с использованием треугольных титановых имплантатов, напечатанных на 3D-принтере.

Патель В., Ковальский Д., Мейер С.К., Чоудхари А., Локстадт Х., Течи Ф., Биллис Дж., Лимони Р., Юань П.С., Краненбург А., Шер Д., Тендер Г.

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2019 г., 12:203-214

Дата публикации: 27 мая 2019 г.

Оригинальное исследование

Создание междисциплинарной и многоцентровой исследовательской группы по использованию 3D-печати в общей торакальной хирургии: уроки, извлеченные из нашего первого года опыта

Zabaleta J, Aguinagalde B, López I, Laguna SM, Mendoza M, Galardi A, Matey L, Larrañaga A, Baqueriza G, Izeta A

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2019 г., 12:143-149

Дата публикации: 2 мая 2019 г.

Оригинальное исследование

Микро-КТ как метод сравнения перфузии в линейках хирургических скобок с градуированной и одинарной высотой

Эшбах М., Синдберг Г.М., Годек М.Л., Нагельшмидт М., Пакетт Н., Вегенер М., Альберино Дж., Майотт Дж., Васанджи А., Миссе AM

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2018 г., 11: 267-273

Дата публикации: 15 августа 2018 г.

Отчет о клинических испытаниях

Отдаленные проспективные результаты миниинвазивного чресподвздошно-крестцово-подвздошного спондилодеза с использованием титановых имплантатов треугольной формы

Дарр Э., Мейер С.К., Ванг П.Г., Ковальский Д., Фрэнк С., Локштадт Х., Лимони Р., Редмонд А., Плоска П., О М.И., Шер Д., Чоудхари А.

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2018 г., 11:113-121

Дата публикации: 9 апреля 2018 г.

Перспективы

Ультразвуковое слияние в помещении в сочетании с полностью совместимым держателем, напечатанным на 3D-принтере, — переосмысление интервенционной МРТ

Фрибе М., Санчес Дж., Балакришнан С., Илланес А., Нагарадж Ю., Оденбах Р., Матук М., Кромбах Г., Вогеле М., Бозе А.

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2018 г., 11:77-85

Дата публикации: 15 марта 2018 г.

Оригинальное исследование

Рандомизированное контролируемое исследование гемостатического пластыря Veriset™ для остановки сердечно-сосудистых кровотечений

Глайнер Д., Хендриккс М., Кривиньш Д., Страдиньш П., Восс Б., Уолдоу Т., Хэнен Л., Оберхоффер М., Ричи К.М.

Медицинские устройства: данные и исследования 2018, 11:65-75

Дата публикации: 8 марта 2018 г.

Оригинальное исследование

Может ли машинное обучение дополнить традиционное наблюдение за медицинскими устройствами? Практический пример двухкамерных имплантируемых кардиовертеров-дефибрилляторов

Росс Дж. С., Бейтс Дж., Парзински С. С., Акар Дж. Г., Кертис Дж. П., Десаи Н. Р., Фримен Дж. В., Гэмбл Г. М., Кунц Р., Ли С. С., Маринак-Дабич Д., Масуди Ф. А., Норманд С. Л. Т., Ранасингхе И., Шоу Р. Е., Крумхольц Х. М.

Медицинские устройства: данные и исследования 2017 г., 10:165-188

Дата публикации: 16 августа 2017 г.

Оригинальное исследование

Многоцентровое проспективное исследование пациентов, перенесших открытую пластику вентральной грыжи с внутрибрюшинным расположением с использованием вентральной заплаты из композитного моноволокна на основе полиэстера: промежуточные результаты исследования PANACEA

Berrevoet F, Doerhoff C, Muysoms F, Hopson S, Muzi MG, Nienhuijs S, Kullman E, Tollens T, Schwartz MR, LeBlanc K, Velanovich V, Jørgensen LN

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2017 г., 10:81-88

Дата публикации: 12 мая 2017 г.

Оригинальное исследование

Metered Cryospray™: новый однородный, контролируемый и последовательный криогенный спрей с жидким азотом in vivo.

Mulcahey TI, Coad JE, Fan WL, Grasso DJ, Hanley BM, Hawkes HV, McDermott SA, O’Connor JP, Sheets EE, Vadala CJ

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2017 г., 10:29-41

Дата публикации: 17 февраля 2017 г.

Оригинальное исследование

Инструментальная тактильная диагностика в робот-ассистированной хирургии

Солодова Р.Ф., Галатенко В.В., Накашидзе Э.Р., Андрейцев И.Л., Галатенко А.В., Сенчик Д.К., Староверов В.М., Подольский В.Е., Соколов М.Е., Садовничий В.А.

Медицинские устройства: данные и исследования 2016 г., 9:377-382

Дата публикации: 31 октября 2016 г.

Оригинальное исследование

Возможность использования нового одноразового автоинъектора для иксекизумаба: результаты качественного исследования и открытого клинического испытания, включая опыт пациентов

Каллис Даффин К., Бухало М., Бобонич М.А., Шром Д., Чжао Ф., Кершнер Дж.Р., Гилл А., Пангалло Б., Шулер С.Л., Бублик Дж.

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2016 г., 9:361-369

Дата публикации: 12 октября 2016 г.

Оригинальное исследование

Принятие многоразового самоинъекционного устройства для рекомбинантного гормона роста человека: окончательные данные основанного на опроснике, поперечного, международного, многоцентрового, обсервационного исследования у детей

Schnabel D, Partsch CJ, Houang M, Ehtisham S, Johnstone H, Zabransky M, Kiess W

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2016 г., 9:317-324

Дата публикации: 7 сентября 2016 г.

Оригинальное исследование

Стенты с лекарственным покрытием из биодеградируемого полимера для лечения пациентов с сахарным диабетом: клинический результат через 2 года в большой популяции пациентов

Вимер М., Данзи Г.Б., Уэст Н., Вудрис В., Конинг Р., Хоффманн С., Ломбарди М., Маури Дж., Бабич Р., Уизероу Ф.

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2015 г., 8:153-160

Дата публикации: 18 февраля 2015 г.

Обзор

Новые немедикаментозные подходы к профилактике инсульта при фибрилляции предсердий: результаты клинических испытаний

Проетти Р., Джоза Дж., Аренси А., Леви М., Руссо В., Цикас А., Данна П., Сагоне А., Векка М., Эссебаг В.

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2015 г., 8:103-114

Дата публикации: 29 января 2015 г.

Оригинальное исследование

Точность компьютерной первичной реконструкции нижней челюсти васкуляризированными костными лоскутами: костный лоскут из гребня подвздошной кости в сравнении с костно-мышечно-кожным лоскутом малоберцовой кости

Modabber A, Ayoub N, Möhlhenrich SC, Goloborodko E, Sönmez TT, Ghassemi M, Loberg C, Lethaus B, Ghassemi A, Hölzle F

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2014 г., 7: 211-217

Дата публикации: 16 июня 2014 г.

Серия чемоданов

Новое устройство для восстановления кинематики после тотального эндопротезирования фасеточных суставов

Vermesan D, Prejbeanu R, Daliborca ​​CV, Haragus H, Magureanu M, Marrelli M, Promenzio L, Caprio M, Cagiano R, Tatullo M

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2014 г., 7:157-163

Дата публикации: 29 мая 2014 г.

Оригинальное исследование

Валидация и простота использования нового устройства-ручки для самостоятельного введения рекомбинантного гормона роста человека: результаты двухцентрового исследования удобства использования

Рапапорт Р., Сенгер П., Шмидт Х., Хасегава Ю., Колле М., Лоче С., Маркантонио С., Бонфиг В., Забрански М., Лифшиц Ф.

Медицинские устройства: данные и исследования 2013 г., 6:141-146

Дата публикации: 2 сентября 2013 г.

Гипотеза

Проект MEchatronic Respiratory System SImulator for Neonatal Applications (MERESSINA): новая цель биоинженерии

Scaramuzzo RT, Ciantelli M, Baldoli I, Bellanti L, Gentile M, Cecchi F, Sigali E, Tognarelli S, Ghirri P, Mazzoleni S, Menciassi A, Cuttano A, Boldrini A, Laschi C, Dario P

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2013 г., 6:115-121

Дата публикации: 8 августа 2013 г.

Оригинальное исследование

Дизайн и оценка недорогого протеза руки с электромиографическим контролем

Polisiero M, Bifulco P, Liccardo A, Cesarelli M, Romano M, Gargiulo GD, McEwan AL, D’Apuzzo M

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2013 г., 6:97-104

Дата публикации: 28 июня 2013 г.

Оригинальное исследование

Экономически эффективное устройство терапевтической гипотермии для лечения гипоксически-ишемической энцефалопатии

Ким Дж.Дж., Бухбиндер Н., Аммануэль С., Ким Р., Мур Э., О’Доннелл Н., Ли Дж.К., Куликович Э., Ачарья С., Аллен Р.Х., Ли Р.В., Джонстон М.В.

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2013 г., 6:1-10

Дата публикации: 3 января 2013 г.

Быстрая связь

Изучение роли комбинированной акустико-визуальной обратной связи в одномерных синхронных компьютерных интерфейсах мозга, предварительное исследование

Gargiulo GD, Mohamed A, McEwan AL, Bifulco P, Cesarelli M, Jin CT, Ruffo M, Tapson J, van Schaik A

Медицинские устройства: фактические данные и исследования 2012 г., 5:81-88

Дата публикации: 26 сентября 2012 г.

Оригинальное исследование

Сравнение точности ES-BC, EIS-GS и ES Oxi в отношении состава тела, активности вегетативной нервной системы и сердечного выброса со стандартными оценками

Льюис Дж.Э., Танненбаум С.Л., Гао Дж., Мелилло А.Б., Лонг Э.Г., Алонсо Ю., Конефал Дж., Вулгер Дж.М., Леонард С., Сингх П.К., Чен Л., Тиоццо Э.

Медицинские устройства: данные и исследования 2011 г., 4:169-177

Дата публикации: 16 сентября 2011 г.

Сульфат хондроитина процветает бактериям, секретирующим сульфатазу в кишечнике, повреждая слои слизи, выделяя бактериальный мусор и вызывая воспалительные поражения у мышей

%PDF-1.7 % 1 0 объект >/Контуры 3 0 R/Страницы 4 0 R/Тип/Каталог>> эндообъект 645 0 объект >поток приложение/pdf

  • Администратор
  • Сульфат хондроитина способствует развитию бактерий, секретирующих сульфатазу в кишечнике, повреждая слои слизи, высвобождая бактериальный мусор и вызывая воспалительные поражения у мышей
  • D:20170603100957+02’09’2017-06-03T10:09:57+02:00WPS Office2022-03-07T16:57:43-08:002022-03-07T16:57:43-08:00uuid:52b2325c-1dd2 -11b2-0a00-190a278d5b00uuid:52b23269-1dd2-11b2-0a00-1e0000000000 конечный поток эндообъект 3 0 объект > эндообъект 4 0 объект > эндообъект 215 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 216 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 217 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 218 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 219 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 220 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text/ImageC]/XObject>>>/Type/Page>> эндообъект 221 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 222 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text/ImageC]/XObject>>>/Type/Page>> эндообъект 223 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text/ImageC]/XObject>>>/Type/Page>> эндообъект 224 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text/ImageC]/XObject>>>/Type/Page>> эндообъект 225 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text/ImageC]/XObject>>>/Type/Page>> эндообъект 226 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text/ImageC]/XObject>>>/Type/Page>> эндообъект 227 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text/ImageC]/XObject>>>/Type/Page>> эндообъект 228 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text/ImageC]/XObject>>>/Type/Page>> эндообъект 229 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 230 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text/ImageC]/XObject>>>/Type/Page>> эндообъект 231 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 232 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 233 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 234 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 235 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 236 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 237 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 238 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 696 0 объект [698 0 Р 699 0 Р] эндообъект 697 0 объект >поток H̗mo#/ Z/,\[email protected]$P”PlYmd]ۗ.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.